本项目利用RNAi技术、质粒转染等方法建立增强表达和抑制表达CIC3的大鼠海马神经元细胞模型,结合免疫沉淀、激光扫描共聚焦显微技术、膜片钳等研究策略,以神经元突触囊泡胞吞过程为研究对象,深入诠释突触囊泡再循环细节以及生理调控方式和位点。本研究首次证实CIC3是dynamin-1的分子伴侣(binding partner),并提出CIC3-dynamin-1信号通路通过磷酸化/去磷酸化作用调节突触囊泡的胞吞过程,且该通路与癫痫样放电密切相关。对突触囊泡再循环与CIC3和dynamin-1改变关系的研究,有助于我们对突触活动的深入了解,为临床难治性癫痫的治疗打开了新视角,提供了新思路。
本项目利用RNAi技术、质粒转染等方法建立增强和抑制表达CIC3大鼠海马神经元细胞模型,结合免疫沉淀、激光扫描共聚焦显微技术、膜片钳等研究策略,以神经元突触囊泡胞吞过程为研究对象,深入诠释突触囊泡再循环细节以及生理调控方式和位点。 本研究首先利用氯化锂-匹罗卡品诱导建立内侧颞叶癫痫(MTLE)大鼠模型,采用比较蛋白质组学方法,发现dynamin-1可能与MTLE大鼠急性发作及慢性自发痫性发作均有着密切关系。利用免疫组化、Western Blot等方法证实在MTLE大鼠模型中,磷酸化dynamin-1蛋白在MTLE患儿及MTLE大鼠出现痫性发作期间表达下调,而dynamin-1总蛋白在MTLE大鼠各期、MTLE患儿及对照组海马之间表达无明显差异。提示dynamin-1可能通过磷酸化/去磷酸化方式参与了MTLE的发生发展。进一步利用体外癫痫细胞模型中导入dynamin-1的抑制剂dynasore,可以显著抑制突触囊泡的胞吞作用,减少痫性放电的数目及幅度,证实了dynamin-1在癫痫发生发展中的作用。然后通过构建dynamin-1-GST重组融合蛋白,利用Pull down联合质谱技术筛选、鉴定,发现氯离子通道蛋白CIC3为dynamin-1的相互作用蛋白,并提出CIC3-dynamin-1信号通路可能通过磷酸化/去磷酸化作用调节突触囊泡的胞吞过程。 为进一步探讨其机制,本研究用过表达(full-length CIC-3)及抑制型CIC-3(CIC-3-shRNA337)质粒进行转染,利用转铁蛋白标记突触囊泡的胞吞。在CIC-3过表达状态下,dynamin-1磷酸化未受明显影响;而CIC-3被抑制时,dynamin-1磷酸化减少(去磷酸化状态),活性增加,提示CIC-3与dynamin-1的活化呈负相关。胞吞和膜片钳实验中,抑制CIC-3后,胞吞量明显增加,癫痫样放电数目和幅度均有增加;而抑制dynamin-1GTPase酶活性的情况下(磷酸化状态),再抑制CIC-3的表达,胞吞量及电生理较对照组无明显变化,从而证实了CIC-3通过调控dynamin-1参与了突触囊泡胞吞。 本研究结果显示CIC3-dynamin-1信号通路通过磷酸化/去磷酸化作用调节突触囊泡的胞吞过程。对其的深入研究,将为难治性癫痫的治疗打开新的视角,提供潜在的治疗靶点。