感染可以损伤胰岛β细胞功能。申请者的前期研究发现胰岛β细胞在高糖等的刺激下发生氧化应激产生活性氧ROS(Ge QM, et al.CMB,2010),进一步预实验中发现胰岛β细胞上有脂多糖(LPS)受体TLR4的表达,推测严重感染时LPS有可能通过对TLR4的直接作用影响胰岛β细胞,通过氧化应激诱导胰岛β细胞凋亡,使胰岛素等的分泌功能异常,机体血糖升高。本课题探讨了LPS对胰岛β细胞分泌功能、TLR4表达的影响,并从分子水平、细胞水平研究LPS对胰岛β细胞ROS生成、凋亡和TLR4之间的关系,以及在LPS对胰岛β细胞作用的上游和下游途径应用抗TLR4抗体、抗氧化剂α-硫辛酸分别进行干预,并进一步采用脓毒症大鼠模型验证体外实验结果。本研究旨在进一步探讨应激性血糖升高的分子机制,为控制改善危重病高血糖提供新的治疗途径。
pancreatic cells;lipopolysaccharide;TLR4;oxidative stress;apoptosis
在严重感染、脓毒症等所致应激状态下,无糖尿病病史的中重度感染患者出现应激性高血糖的发生率约为50%。机体感染后出现血糖升高,胰岛β细胞损伤是其重要原因。引起β细胞功能减退的核心机制是氧化应激,ROS生成明显增多不仅损害胰岛素的分泌,还可诱导细胞凋亡。 本课题在原代细胞水平和INS-1胰岛β细胞株证实胰岛β细胞上有TLR4的表达,高浓度LPS使TLR4表达增加(P<0.05),LPS刺激胰岛β细胞12h后TLR4表达上调(P<0.05),随着时间进一步的延长TLR4的表达降低(P>0.05)。在0.01~10μg/mL范围内,LPS刺激24h后大鼠胰岛β细胞产生ROS增多,呈剂量依赖性(P<0.01)。我们发现,1μg/mL LPS作用INS-1细胞株48h,细胞内Bax蛋白水平升高到131.2%,而Bcl-2蛋白水平下降到51.5%。我们进一步对凋亡途径进行检测,结果证实,与对照组相比,LPS处理组Caspase-3和Caspase-8、caspase-9蛋白的表达、mRNA表达显著增加。课题组在LPS对胰岛β细胞作用的上游和下游途径应用抗TLR4抗体、抗氧化剂α-硫辛酸(α-LA)分别进行干预,结果发现抗TLR4抗体或α-LA干预后,胰岛β细胞活力没有明显降低,胰岛细胞ROS的生成降低,细胞平均荧光强度(MFI)降低,胰岛β细胞凋亡率降低,抑制LPS所引起的BAX/Bcl-2 mRNA和蛋白水平的增加(P<0.05)。为了明确TLR4在LPS所致氧化应激中的关键作用,我们构建了TLR4 shRNA,对TLR4基因沉默后,研究LPS对胰岛β 细胞活力、氧化应激和凋亡的影响。结果发现,与正常对照组比较,对TLR4沉默后,LPS抑制胰岛β 细胞的细胞活力、诱导氧化应激和发生凋亡的影响没有显著性差异,caspase-3、caspase-8和caspase-9的表达变化没有统计学意义,说明LPS通过TLR4介导胰岛β细胞发生氧化应激,诱导胰岛β细胞凋亡。 本课题组进一步探讨脓毒症大鼠胰岛中TLR4表达、氧化应激、凋亡、胰岛细胞分泌功能的变化,并用抗TLR4抗体和α-LA分别进行干预,结果证实脓毒症大鼠胰岛TLR4表达上调,介导胰岛进一步氧化应激、凋亡,胰岛素分泌减少,其作用可部分被抗TLR4抗体和α-LA阻断。